脂質(zhì)體作為體內(nèi)和體外輸送載體的工具，已經(jīng)研究的十分廣泛，中性脂質(zhì)體是利用脂質(zhì)膜包裹DNA，借助脂質(zhì)膜將DNA導(dǎo)入細胞膜內(nèi)。帶正電的陽離子脂質(zhì)體，DNA并沒有預(yù)先包埋在脂質(zhì)體中，而是帶負電的DNA自動結(jié)合到帶正電的脂質(zhì)體上，形成DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物，從而吸附到帶負電的細胞膜表面，經(jīng)過內(nèi)吞被導(dǎo)入細胞。下面讓我們一起來看看脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的原理與方法吧！

　　脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染操作步驟

　　進行實驗之前，請先規(guī)劃好實驗，一般細胞轉(zhuǎn)染需要24h-72h，所以要充分了解細胞生長速度，計算所需脂質(zhì)體和DNA的儲備量，并確認準備好所需試劑：Opti-MEM無血清培養(yǎng)基，Lipofectamine轉(zhuǎn)染試劑，以及DNA。

　　1、細胞鋪板

　　（1）一般會選擇復(fù)蘇細胞傳代3-4次，從解凍過程中恢復(fù)過來可以穩(wěn)定生長的細胞進行細胞轉(zhuǎn)染，傳代次數(shù)高(>30-40)時，細胞的生長速度和形態(tài)會改變。

　　（2）如果提總蛋白，一般選擇六孔板進行轉(zhuǎn)染，因為轉(zhuǎn)染的細胞提取蛋白的總量能達到200ug，一般夠做并且需要的DNA和Lipofectamine又相對比較少。

　　（3）傳代條件取決于所用的細胞系。對于快速生長的細胞，倍增時間為16小時(如HEK293)。對于生長緩慢的細胞，倍增時間為36小時(如原代細胞)。

　?。?）轉(zhuǎn)染當天，將細胞鋪板。如果在轉(zhuǎn)染前一天或更早時間鋪板，轉(zhuǎn)染效率可能下降，如果是簡單細胞系的轉(zhuǎn)染，可以直接在前一天晚上鋪板，第二天來轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染時，細胞密度會影響轉(zhuǎn)染效率，細胞密度保持在匯合率為70-90%（這個前提是轉(zhuǎn)染24h，如果轉(zhuǎn)染48h則需要匯合率為50-70%），細胞的鋪板和轉(zhuǎn)染也可同時進行。

　　2、細胞轉(zhuǎn)染

　　吸去培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。更換無血清培養(yǎng)基。準備轉(zhuǎn)染制備液，用滅菌后的EP管制備。以六孔板為例，A液：用200μl Opti-MEM稀釋4μg質(zhì)粒；B液:用200μl Opti-MEM稀釋10μl lipo2000，分別將A液、B液輕輕混勻，靜置5min，吸取B液加入至A液中，輕輕混勻，室溫靜置20min。加入轉(zhuǎn)染試劑到每個孔的培養(yǎng)基中，6h后，更換成完q培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)到24-48小時（不同的質(zhì)粒和脂質(zhì)體最佳搭配比例不同，轉(zhuǎn)染前，應(yīng)該摸一個最佳配比。質(zhì)粒：脂質(zhì)體=1：1，1：1.5，1：2，1：2.5，1：3，1：3.5的梯度比例來檢測最佳轉(zhuǎn)染比例，一般質(zhì)粒有帶熒光，可以通過觀察每組熒光強弱來判斷轉(zhuǎn)染效率）。以下為不同規(guī)格的培養(yǎng)板需要加DNA和lipo2000的量。

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